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D11E8A1E6小鼠杂交瘤细胞
货号:BY-1201
品牌:其它品牌
规格:T25瓶
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D11E8A1E6 小鼠杂交瘤细胞
一、编号规则与背景溯源
细胞命名中的字符通常为实验室内部编码,可能对应以下信息:
融合与筛选批次
:
D11
:可能代表第 11 组融合实验的 D 批次(如不同免疫方案或骨髓瘤细胞系的组合,如 SP2/0 或 NS0 细胞)。
E8
:可能为第 8 轮筛选得到的阳性克隆群(常见筛选手段包括有限稀释法、ELISA 或流式细胞术)。
孔板定位与克隆顺序
:
A1E6
:可能对应 96 孔板中第 1 行第 6 列的克隆孔(部分实验室以字母表示行,数字表示列,或采用分组 + 序号规则)。
注意
:此类编号无公共数据库统一记录,需结合细胞来源文献或提供者说明确认具体含义。
二、核心研究流程与关键实验
1.
抗体特异性鉴定
靶抗原确认
:
实验方法
:通过
ELISA
检测细胞培养上清与候选抗原的结合活性,或利用 ** 免疫印迹(WB)** 分析其对细胞裂解物 / 纯化蛋白的识别能力。
示例
:若该细胞来自肿瘤免疫研究,可能靶向小鼠肿瘤抗原(如 CT26 结肠癌细胞表面蛋白)或免疫检查点分子(如 PD-L1)。
表位分析
:
使用合成肽库或抗原结构域截断体,通过
竞争 ELISA
或 ** 表面等离子共振(SPR)** 确定抗体识别的线性表位或构象表位,为机制研究奠定基础。
2.
细胞培养与抗体生产
基础培养条件
:
常规使用含 10% 胎牛血清(FBS)的 RPMI 1640 培养基,37℃、5% CO?培养,每 2-3 天传代一次,维持密度在 5×10?–1×10? cells/mL。
大规模生产优化
:
无血清培养
:尝试使用商业化培养基(如 HyClone SFM4CHO)以降低成本,需逐步驯化细胞适应无血清环境。
腹水制备
:向 Balb/c 小鼠腹腔注射 0.5–1×10?个细胞(提前注射降植烷诱导腹腔炎症),7–14 天后收集腹水,抗体浓度可达 1–10 mg/mL。
3.
功能验证与应用场景
诊断试剂开发
:
若抗体靶向病原体(如流感病毒血凝素蛋白),可用于制备胶体金试纸条或化学发光检测试剂,需验证其灵敏度(LoD)和特异性(交叉反应率<5%)。
治疗性抗体评估
:
体外功能
:通过流式细胞术检测抗体介导的细胞凋亡(Annexin V/PI 染色)、ADCC 效应(使用 Jurkat-FcγRIIIa 报告细胞)或补体激活(CDC 实验)。
体内模型
:在荷瘤小鼠模型(如 BALB/c 小鼠皮下接种 CT26 肿瘤)中测试抗体的抗肿瘤效果,监测瘤体体积、体重变化及生存周期。
三、获取细胞株详细信息的途径
由于编号为实验室自定义,需通过以下方式追溯背景:
文献检索
:
在 PubMed、Google Scholar 等平台检索关键词组合,如 “D11E8A1E6 hybridoma”“A1E6 monoclonal antibody”,或结合研究方向(如 “cancer”“autoimmunity”)筛选相关论文,重点关注材料与方法部分的细胞构建描述。
细胞库查询
:
部分细胞株可能在 ATCC、DSMZ 或 JCRB 等机构保藏,需通过抗体靶点或实验室名称匹配编号(如 ATCC CRL-1789 为抗 CD3 抗体杂交瘤细胞)。
联系构建团队
:
索取《细胞特性说明书》,内容应包括:
? 免疫原类型(如重组蛋白、肿瘤细胞裂解物)
? 抗体亚型(IgG1/IgM 等)与亲和力(KD 值,通过 SPR 或 ELISA 测定)
? 交叉反应性数据(如与人类 / 大鼠同源抗原的结合活性)
四、实验操作与质量控制
生物**与合规性
:
操作小鼠源性细胞需遵循 BSL-2 标准,涉及基因编辑(如敲除 FcγR 基因)时需申报伦理审查。
废弃物需经高压灭菌处理,避免人畜共患病原体泄漏(若抗体靶向人畜共患病原,如狂犬病毒)。
细胞稳定性管理
:
冻存与复苏
:冻存时使用 90% FBS+10% DMSO,程序降温至 - 80℃后转入液氮;复苏后 24 小时内活率应>85%,且抗体分泌水平无显著下降(差异<15%)。
污染检测
:每 2 个月进行支原体(Mycoplasma Detection Kit)、细菌 / 真菌(培养法)及鼠源性病毒(如 MMTV)检测。
抗体纯化与表征
:
纯化流程
:腹水 / 上清通过 Protein A/G 亲和层析纯化,结合 Tris-HCl 洗脱(pH 2.8–3.0),随后用 PBS 透析去除盐分。
质量检测
:SDS-PAGE 验证纯度(单一条带,纯度>95%),ELISA 测定效价(腹水稀释度通常>1:10?),质谱确认分子量(IgG 约 150 kDa)。
五、前沿技术与研究拓展
抗体人源化与优化
:
利用噬菌体展示技术或酵母表面展示系统,对小鼠抗体的互补决定区(CDR)进行人源化改造,降低临床应用时的免疫原性(人源化率>90%)。
双特异性抗体构建
:
将 D11E8A1E6 细胞的抗体基因与另一靶点抗体(如抗 Her2)通过 Linker 串联,制备双特异性抗体(如 BiTE 结构),增强肿瘤细胞靶向性。
单细胞测序分析
:
对单个杂交瘤细胞进行单细胞 RNA 测序(scRNA-seq),分析抗体基因重排(VDJ 测序)及转录组异质性,筛选高分泌克隆(IgG 转录本表达量前 10% 的细胞)。
总结
“D11E8A1E6 小鼠杂交瘤细胞” 的研究需以其分泌抗体的功能为核心,通过 “抗原 - 抗体互作解析→细胞工艺优化→转化应用验证” 的路径推进。若需进一步研究,建议优先明确免疫原背景或通过高通量筛选技术挖掘其潜在价值。如需文献检索、实验设计或技术合作,可提供更多线索!
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